正確采集、運送、接收和保存樣本是獲得準確、可靠檢驗結果的首要環節，但臨床檢測樣本種類多樣，比如檢測非洲豬瘟病原學樣品就包括：唾液、全血、血清、組織、蜱、環境拭子等。
不同的樣品需要選擇合適的前處理和核酸提取方法，除去蛋白、脂類和核酸酶等干擾核酸擴增的物質，對保證檢測結果的準確性十分重要。

其中，核酸提取的成敗關系到臨床PCR檢驗的正確與否，也是最容易出問題的環節。

而核酸提取又跟樣品的前處理密切相關，不同的樣本類型，樣品的前處理過程會有差異。

常見樣品的前處理過程（簡化版）

1. 唾液：取唾液樣品1ml加入1.5ml離心管中，離心3分鐘，沉淀雜質，取上清液200ul用于核酸提取。

2. 全血：直接從采集的血樣中取200ul用于核酸提取。

3. 血漿：取1ml的抗凝血加入1.5ml離心管中，離心（3000rpm）5分鐘，取上清液200ul用于核酸提取。

4. 血清：取1~2ml新鮮血液靜置待血清析出或離心（3000rpm）5分鐘，取上清液200ul用于核酸提取。

5. 拭子：適用于鼻拭子、肛門拭子、咽拭子、水泡拭子等。將棉拭子樣本置于1.5ml離心管中；加入1ml生理鹽水，生理鹽水以沒過棉簽頭為宜，浸泡并震蕩1分鐘。

6. 精液：新鮮采集的精液，經室溫放置30min，至呈液化狀態；取其中1ml加入1.5ml離心管中，反復凍融不超過3次，以裂解細胞；離心3分鐘，取上清200ul用于核酸提取。

7. 病毒培養液：直接吸取200μL原液用于核酸提??；或者使用生理鹽水將原液稀釋1:10或1:100，取200μL用于核酸提取。

8. 活疫苗凍干粉：使用生理鹽水或疫苗稀釋液稀釋疫苗干粉（1mL/頭份），并充分搖勻，直接吸取200μL用于核酸提??；或使用生理鹽水將原液稀釋1:10或1:100，取200μL用于核酸提取。

9. 飼料：對飼料樣本先進行物理粉碎，然后浸泡15~30分鐘，離心取上清液200μL用于核酸提取。

10. 病料組織：剪取病料病變邊緣部位的組織，約米粒大小，置于1.5ml離心管中，吸取200ul生理鹽水加入離心管，研磨處理至組織塊完全分離，補充生理鹽水至500μL，充分混勻后，取200μL用于核酸提取，剩余的低溫留存用于復檢。

為什么要進行核酸提??？